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免疫熒光從未如此簡單|使用μ-Slide VI 0.4的免疫熒光實驗方案

date:2024-02-23 14:14:46

  熒光肌動蛋白染色,特別是使用phalloidin,通過顯微鏡深入了解細胞結構和過程的一種強大方法。這種方法可以對肌動蛋白絲進行特定的可視化,使熒光肌動蛋白染色成為科學家解答許多與細胞生物學相關問題(包括細胞骨架組織和動力學)的不可或缺的工具。

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  本實驗方案中,我們提出了一種使用µ- slide VI 0.4六通道載玻片培養和對粘附性人纖維肉瘤細胞系HT-1080肌動蛋白熒光染色的簡便方案。

 

  請注意: 在開始肌動蛋白熒光染色之前必須檢查幾個重要的參數,如最佳細胞密度,理想的細胞培養器皿及底部/涂層。此外,陽性和陰性對照是驗證染色的必要條件。因此,我們強烈建議在實驗前進行充分的文獻研究。

 

  1. 材料

 

  1.1. 試劑和緩沖液

 

  細胞培養

  • HT-1080細胞(85111505, Sigma Aldrich)

  • 細胞培養基: DMEM (D6546, Sigma Aldrich),含10%胎牛血清 (F1283, Sigma Aldrich)

  • D-PBS (14190144, Gibco)

  • Accutase (A1110501, Gibco)

  

  熒光染色與成像

  • D-PBS (14190144, Gibco)

  • 福爾馬林,10%,當即可用 (HT5011, Sigma Aldrich)

  • Triton-X-100 (A16046, Thermo Fisher Scientific)

  • 滲透性緩沖液 (0.1% Triton-X-100 in D-PBS)

  • 牛血清白蛋白 (BSA) (A1470-10G, Sigma Aldrich)

  • 封閉緩沖液 (1% BSA in D-PBS)

  • Phalloidin溶液:1µl Phalloidin- ifluor 488 Reagent (ab176753, Abcam)在1 ml封閉緩沖液中

  • ibidi封片劑,含DAPI (50011, ibidi)

  • ibidi浸漬油 (50101, ibidi)

  

  1.2. 設備

  • µ-Slide VI0.4 ibiTreat (80606, ibidi)

  • µ-Slide支架 (80003, ibidi)

  • 標準細胞培養設備(移液槍,超凈工作臺,細胞培養箱,培養瓶,細胞培養基,血細胞計等)

  • 倒置熒光顯微鏡與適配的濾光片組

  

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  2. 方法

  

  2.1. 細胞培養

  

  在使用μ -Slide VI0.4之前,請閱讀使用說明書。在無菌條件下進行所有步驟。建議在細胞接種前一天將

  

  µ-Slide VI0.4和細胞培養基放入培養箱中,以避免處理過程中形成氣泡。在開始實驗之前,在具有粘附細胞的標準底的細胞培養瓶(例如T75)中制備HT-1080細胞。理想情況下,在實驗當天,細胞應該是低融合和健康的。

  

  在整個過程中迅速工作是至關重要的,以防止細胞干涸。

  

  如未另行說明,所有給定的體積都是單通道的,所有培養步驟都是在室溫下進行的。

  • 將10ml Accutase加入T75培養瓶中進行細胞分離;在培養箱(37°C,5%CO2)中培養5分鐘。

  • 收集細胞懸液,離心,并將其稀釋在少量細胞培養基中進行計數。

  • 計數細胞,并在細胞培養基中調整到最終濃度為3 × 105 cells/ml。

  • 打開ibidi µ-Slide VI0.4,并將其放在µ-Slide支架或合適的表面上。

  • 將30µl HT-1080細胞懸液移液填充到每個通道中。快速填充有助于避免截留氣泡。

  • 通過傾斜µ-Slide通道載玻片并輕敲一側邊緣,清除通道中截留的氣泡。

  • 用隨附的蓋子蓋上儲液池。

  • 將µ-Slide通道載玻片與支架放入培養箱(37 °C, 5 % CO2),讓細胞附著 ( 1小時)。

  • 在每個儲液池中加入60µl無細胞細胞培養基。避免截留氣泡。

  • 將µ-Slide通道載玻片與支架放入培養箱(37 °C, 5 % CO2),并將細胞孵育過夜。

  •  就延長細胞培養,建議每兩天連續更換一次培養基(詳見如下2.2)。

  

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  2.2.  連續更換培養基

  • 小心地從儲液池中抽吸培養基。不要從通道中吸入任何液體。

  • 輕輕地將120µl無細胞培養基導入一個儲液池中,使通道得以補充。

  • 從對面的儲液池中抽吸舊的培養基。使用細胞培養抽吸裝置時要小心,因為這可能會吸走部分附著的細胞或細胞簇。

  • 每個儲液池使用60µl無細胞培養基重新填充儲液池。

  

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以最小容量為通道容量的三倍連續更換培養基

  

  2.3. 固定, 透化和封閉

  • 快速執行所有步驟,確保通道不會干涸。為實驗準備足夠的滲透緩沖液和封閉緩沖液。

  • 通過連續的培養基交換用D-PBS代替細胞培養基進行洗滌。

  • 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。

  • 用100µl福爾馬林(10%)固定細胞20分鐘。

  • 連續換液,用200µl D-PBS洗滌細胞3次。

  • 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。

  • 在100µl滲透緩沖液中孵育細胞5分鐘。

  • 用200µl D-PBS連續換液清洗細胞。

  • 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。

  • 用100µl封閉緩沖液封閉20分鐘。

  • 用200µl D-PBS清洗細胞。

  

  2.4.  染色

  • 從儲液器和通道中吸出所有D-PBS。使用5毫升注射器填充空通道,以盡量減少引入氣泡的風險。

  • 立即將30µl的phalloidin溶液加入通道中; 在暗處培養20分鐘。樣品應盡可能放在暗處保存。

  • 連續交換培養基,用200µl D-PBS洗滌細胞2次。

 

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  2.5.  封片

  •  吸取所有D-PBS,立即加入ibidi含DAPI的封片劑進行核染色,直到通道被填滿。如果使用不同的封片劑,請注意它必須是非干燥的,以避免損壞µ-Slide。

  •  在4°C暗處儲存,直到成像。

  •  染色后的µ-Slide可保存4周。理想情況下,應立即進行成像,因為較長的存儲時間會降低圖像質量。

  

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  2.6.  成像

  •  在熒光顯微鏡下用適當的濾光片組觀察細胞,必要時用ibidi浸漬油。

  • 可選,疊加圖像以創建合并圖像。

  

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  3. 結果

  

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  HT1080細胞在µ-Slide VI 0.4通道載玻片中的寬場熒光顯微成像。使用phalloidin(綠色)觀察F-actin細胞骨架。細胞核用DAPI(藍色)染色。使用Plan Neofluar 40x/0.75物鏡在蔡司Axiovert 135顯微鏡上進行成像。

  

  您的熒光染色結果如果沒有您預期的那樣?請參閱 immunofluorescence troubleshooting guide

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